budidaya udang ramah lingkungan

Pemanfaatanbakteri antagonis sebagai agen pengendalian hayati akan semakin penting darisegi ekosistem akuakultur, karena dapat mengurangi bahkan menghilangkanpenggunaan antibiotik sehingga tercipta sistem budidaya ramah lingkungan danmempersiapkan suatu sistem akuakultur organik yang akhir-akhir ini semakin kuatsehingga penggunaan bakteri antagonis pada budidaya udang windu dapat dijadikansebagai dasar budidaya udang organik di Indonesia. Kepedulian lingkungan, meningkatnya konsumsi ikan, danberkembangnya pasar makanan organik telah memunculkan keinginan untukmewujudkan akuakultur organik sehingga aplikasi bakteri antagonis dapatdijadikan sebagai dasar budidaya udang organik di Indonesia.

Kegiatan budidaya udang windu secara nasional mencapaipuncaknya pada tahun 1991 dan setelah itu menurun drastis karena kegagalanpanen akibat penyakit dan merosotnya daya dukung lahan serta lingkungan. Pada kurung waktu 15 tahun terakhir,masalah lingkungan sering diperdebatkan sebagai biang kegagalan budidaya udang,yang disinyalir bermula dari menurunnya kualitas lingkungan air tambak.  Dalam sistem budidaya udang intensif,kontribusi pakan terhadap penurunan kualitas lingkungan air tambak tidak bisadipungkuri.  Berton-ton pakan sebagaibahan organik dimasukan kedalam petakan tambak dengan harapan dapat memproduksiudang secara maksimal (Anonim, 2004c). Padahal, praktek ini dapat menurunkan kualitas air tambak yang berdampakpada pertumbuhan mikroorganisme patogen dan hama, serta memberikan tekananterhadap kondisi fisiologi udang, yang pada akhirnya menurunkan kemampuan  lingkungan tambak. Semula kegagalan budidaya udang windu dijumpai padatambak udang intensif, namun akhir-akhir ini pada tambak tradisional jugabanyak mengalami kehancuran.

Permasalahan utama yang dihadapi petambak udangwindu adalah serangan penyakit bakteri udang menyala (luminescent vibriosis), karena udang yang terserang pada keadaangelap tampak bercahaya. Penyebab penyakit udang menyala tersebut adalah bakteri Vibrio yang menyebabkan wabah pada awal tahun 1990 hingga sekarang (Irianto,2003). Hal ini terjadi karena merosotnya mutu lingkungan budidaya yaitu mutuair sumber dari perairan di sekitarnya dan mutu lingkungan tambak sendiri(Atmosumarsono et al., 1995). Bakteri Vibrio melakukan serangan secaraganas dan cepat sehingga dapat menimbulkankematian total serta menyerang udang di pembenihan maupun pembesaran.Prayitno (1994) menyebutkan bahwa dari segi ekonomi, berjangkitnya wabah penyakit vibriosis ini melemahkan roda industriudang nasional.

Berbagai penelitian telah dilakukan untukmendapatkan suatu metode pencegahan dan penanggulangan penyakit udang windu,antara lain penggunaan obat-obatan dan antibiotik. Penggunaan antibiotik danbahan kimia tidak efektif lagi karena tidak memberikan hasil yang memuaskankarena pada dosis tertentu justru berdampak negatif dengan meningkatkan resistensibakteri-bakteri patogen terhadap konsentrasi antibiotik (Tjahjadi et al., 1994). Sejumlahisolat Vibrio berpendar yang diisolasi dari tempat pembenihan udang windudi Jawa Timur ternyata resisten terhadapberbagai macam antibiotik seperti spektinomisin, amoksisilin, kloramfeni­kol, eritromisin, kanamisin, tetrasiklin,ampisilin, streptomisin, dan rifampisin.Sementara di lain pihak antibiotik bersifat persisten di alam danbahkan menjadi bumerang terhadap ekspor udang Indonesia (Tompo et al., 2006).

Salah satu upaya yang dapat dilakukan guna mempertahankan keberlanjutandaya dukung ekosistem tambak adalah melalui penggantian aplikasi bahan kimiadan obat-obatan melalui aplikasi musuh alami hama penyakit dan patogen. Programeksplorasi dan pengembangan musuh alami untuk pengendalian hama dan penyakitakan sangat efektif diterapkan dalam upaya pengendalian hama dan penyakitterpadu yaitu melalui aplikasi probiotik.Untuk mengembangkan probiotik yang dapat mengendalikan penyakit telah dilakukanstudi mengenai mikroorganisme yang mempunyai kemampuan menekan patogen. Salahsatu bentuk probiotik adalah konsorsia bakteri antagonis terhadap patogen udangyang efektif menekan populasi patogen dalam ekosistem tambak. Lactobacillus spp.dilaporkan efektif menghambat vibriosis (Jiravanichpaisal dan Chauychuwong,1997), Pseudomonas fluorescens dapat menghambat Vibrio anguilarum (Gramet al., 1999), Bacillus spp. dan Staphylococcus spp. yangberasal dari tambak mampu menekan bakteri Vibrio (Suprapto, 2005). Pemanfaatan bakteri antagonis sebagai agen pengendalianhayati akan semakin penting dari segi ekosistem akuakultur, karena dapat mengurangibahkan menghilangkan penggunaan antibiotik sehingga tercipta sistem budidayaramah lingkungan sekaligus menerapkan sistem keamanan hayati untukmengurangi risiko kontaminasi penyakit pada produksi budidaya udang.

Genus Vibrio merupakanagen penyebab penyakit vibriosis yang menyerang hewan laut seperti ikan, udang,dan kerang-kerangan. Spesies Vibrio yang berpendar umumnya menyeranglarva udang dan penyakitnya disebut penyakit udang berpendar. Bakteri Vibrio menyerang larva udang secara sekunder yaitu padasaat dalam keadaan stress dan lemah,oleh karena itu sering dikatakan bahwa bakteri ini termasuk jenis opportunistic patogen. Gambar vibriosis pada tahap postlarva dankoloni Vibrio sp. dapat dilihat pada Gambar 2. Pemberian pakan yang tidak terkontrolmengakibatkan akumulasi limbah organik di dasar tambak sehingga menyebabkanterbentuknya lapisan anaerob yang menghasilkan H₂S (Anderson etal., 1988 cit. Muliani, 2002). Akibat akumulasi H₂Stersebut maka bakteri patogen oportunistik, jamur, parasit, dan virus mudahberkembang dan memungkinkan timbulnya penyakit pada udang (Tompo et al., 1993cit. Muliani, 2002).

A. Vibriosis postlarva udang windu		B. Koloni Vibrio sp. pada esophagus
Gambar 2. Udang Windu yang Terserang Vibriosis (Breed et al., 1948)

A. Udang tampak normal	B. Udang berpendar pada cahaya gelap
Gambar 3. Bioluminescens Udang Windu Vibriosis (Breed et al., 1948)

Penyakit udang yang disebabkan oleh bakteri Vibriosp. masih menjadi fokus perhatian utama dalam produksi budidaya udang.Penggunaan antibiotik dalam budidaya udang adalah mahal dan merugikaqn karenadapat memunculkan strain bakteri yang tahan terhadap antibiotik serta munculnyaresidu antibiotik dalam kultivan (Decamp dan Moriarty, 2006^a). Antibiotik merupakan suatu senyawa kimiayang sebagian besar dihasilkan oleh mikroorganisme, karakteristiknya tidak sepertienzim, dan merupakan hasil dari metabolisme sekunder. Penggunaan antibiotik yangberlebih padatubuh manusia dapat menyebabkan resistensi sel mikroba terhadap antibiotik yang digunakan.Resistensi sel mikroba adalah suatu sifattidak terganggunya sel mikroba oleh antibiotik (Gan et.al., 1987 dalam Putraatmaja, 1997). Sejumlahisolat Vibrio berpendar yangdiisolasi dari hatcheri udang windu di Jawa Timur ternyata resisten terhadap berbagai macam antibiotik sepertispektinomisin, amoksisilin, kloramfeni­kol,eritromisin, kanamisin, tetrasiklin, ampisilin, streptomisin, dan rifampisin. Sementara di lain pihak antibiotikbersifat persisten di alam dan bahkan menjadi bumerang terhadap ekspor udangIndonesia (Tompo et al., 2006).

Salah satu pengendalian bakteri patogen adalahmempertemukan dengan bakteri antagonisnya. Vershere etal. (2000) cit. Isnansetyo(2005) mengemukakan bahwa bakteri antagonis dalam perannya sebagai agenpengendalian hayati melalui mekanisme menghasilkan senyawa penghambat pertumbuhan patogen, kompetisi pemanfaatan senyawatertentu atau kompetisi tempat menempel,mempertinggi respon imun inang, meningkatkan kualitas air dan adanya interaksidengan fitoplankton. Bakteri antagonis yang digunakan sebagai agen pengendalianhayati dimasukkan dalam istilah probiotik. Menurut Gatesoupe (1999), probiotik merupakan mikrobia yangdiberikan dengan berbagaicara sehingga masuk dalam saluran pencernaan dengan tujuan mempertinggi derajat kesehatan inang.

Bakteri Vibrio sp.NM 10 yang diisolasi dari Leiognathus nuchalis bersifat antagonis terhadap Pasteurella piscicida karena menghasilkan protein dengan berat molekul kuang dari 5 kDA. Protein tersebut diduga bacteriocinatau senyawa serupa bacteriocin (bacteriocin like substance)(Sugita et al., 1997 cit. Isnansetyo, 2005). Bacteriocin adalahsenyawa yang banyak dihasilkan oleh bakteri asam laktat (Ringo and Gatesoupe,1998). Kamei dan Isnansetyo (2003) menemukan Pseudomonas sp. AMSN mampumenghambat pertumbuhan Vibrio alginolyticus karena menghasilkan senyawa2,4 diacetylploroglucinol. Bacillus sp. NM 12 yang diisolasi dariintestine ikan Callionymus sp. mampu  menghambat Vibrio vulnificus RIMD2219009 dengan cara menghasilkan siderofor (Sugita et al., 1998). Siderofor merupakan protein spesifik pengikat ion Fe dengan beratmolekul rendah yang mampu melarutkan Fe yang mengendap. Mekanisme tersebutmerupakan kompetisi pemanfaatan senyawa tertentu oleh mikroorganisme.

Daur hidup udang Penaeusmenurut Wyban dan Sweeney (1991) adalah udang betina bertelur – telur – naupli– protozoea – mysis – poslarva – juvenil – udang dewasa (gambar 5).

Gambar 5. Daur hidup udangPenaeus (Wyban dan Sweeney, 1991)

Stadiayang pertama adalah stadia nauplius yang terjadi setelah telur menetas. Larva masih memiliki cadangan makanan dalam tubuhberupa kuning telur (Sirajudin, 1997). Stadia zoea terdiri dari 3 substadiayang berlangsung selama 6 hari dan mengalami alih bentuk 3 kali. Stadia mysisdicirikan oleh bentuklarva yang mulai menyerupai udang dewasa. Pleopod dan telson mulai berkembang dan larva bergerak mundur (Tjahjadi, 1994). Selanjutnya stadiamysis mengalami alih bentuk menjadi postlarva. Selama 5 hari pertama stadiapostlarva, udang masih bersifatplanktonis, dan pada stadia postlarva-6 udangmulai merayap di dasar (Toro dan Soegiarto,1979 cit. Tjahjadi,1994).

Hasil aplikasipemanfaatan bakteri penghambat dalam pemeliharaanlarva udang dapat dilihat pada (Tabel 2). Isolat-isolat bakteri penghambat GSB-95030 dan GSB-95033tersebut mampu menghambat pertumbuhan bakteriVibrio harveyii dalam air pemeliharaan larva udang windu sampaikepadatan yang jauh lebih rendah yakni5,3 x 10² cfu/mldengan sintasan 67,8% dan 9,9 x 10² cfu/mldengan sintasan 63,5%, dibandingkandengan kontrol 8,7 x 10⁴ cfu/ml dengan sintasan lebih rendah 18,1%.

Tahap terakhir adalahkomersialisasi agen pengendali hayati. Pada tahap ini diperlukan peran industri untuk memperbanyakagenpengendali hayati secara massal dan memfor­mulasikannya dalam bentuk yanglebih stabil dan terstandar. Padatahap akhir inilah data tentang analisisrisiko dari suatu agen pengendalihayati harus dilengkapi untuk memperoleh izin penggunaannya. Beberapaagens hayati berpeluang dapat menyebabkankerusakan pada lingkungan atau mempunyai hubungan yang erat dengan patogen yang menyebabkan penyakit pada manusia, hewan, dan tanaman. Kajian khusus untuk mengelaborasi peluang tersebut perlu dilakukan untuk mencegah hal-hal yang tidak diinginkan akibat penggunaan suatu agens hayati. Berdasarkan pedoman yang disusun oleh FAO (1988 dan 1997) tentang agen hayati untuk tujuan komersial, setiap pengajuan harus dilengkapi dengan informasi mengenai kejelasan identitasdari bahan aktif, karakteristik biologi, data toksisitas, dan data residu sertatoksisitas bagi lingkungan.

Aplikasi pengendalian hayati ini dapat dicobakanmulai dari penyediaan pakan alami yaitu fitoplankon (S. Costatum) danzooplankon (Brachionus dan Artemia) pada pemeliharaan larva, postlarva, maupun benih. Inveksi patogen khususnya pada stadium larva dan postlarva sangat tinggi karena sejak kecil udang terpapar dalam air yang banyakmengandung mikroorganisme. Aplikasi bakteri antagonis dapat diterapkan dalampembuatan pakan obat yaitu dengan menambahkan probiotik dari bakteri antagonis.Pakan tersebut diharapkan dapat membantu menciptakan mekanisme pertahanan tubuhudang, sehingga udang tidak mudah terserang vibriosis. Suprapto (2005)menggunakan formulasi pakan obat dengan metode pembuatan sebagai berikut:Probiotik antagonis Bacillus sp. dengan kepadatan 12,5×10³sel/ml dicampurkan ke dalam pakan. Pencampuran bakteri pada pakan dilakukandengan cara menumbuhkan bakteri selama 48 jam pada TSA pada suhu 25⁰Cdengan 1% NaCl (w/v). Sel bakteri kemudian di panen dengan sentrifugasi 10.000xgselama 15 menit. Sel dimasukkan kedalam 100 ml physiological saline (0,85%NaCl) sebanyak 2,5×10⁵ sel/ml dan dicampur dengan jumlah yang samadengan minyak ikan. Emulsi dicampurkan kedalam 1 kg pakan dengan cara mengadukselama 30 menit untuk mendapatkan dosis eqivalen 25×10³ sel/g padapakan dengan jumlah kandungan minyak ikan sebanyak 10% (w/v).

Prospek pengembangan udang windu sebagai komoditas asli Indonesia mempunyaipeluang bisnis yang cerah. Hal ini terbukti dengan semakin meningkatnya luaslahan budidaya tambak udang Indonesia sampai tahun 2002 mencapai 913.000 hadengan pemanfaatannya baru mencapai 411.230 ha (45,43%). Pemerintah mentargetkanproduksi udang windu budidaya tahun 2007-2009, masing-masing sebesar 126.228ton; 146.615 ton; dan 162.355 ton (DKP, 2006 cit. Kordi 2007) dengan targetperolehan devisa sebesar US $ 8 milyar/th.

1.      Beberapa jenis bakteri antagonis telah diketahui,namun bakteri antagonis tersebut bersifat spesifik di setiap daerah. Olehkarena itu, perlu dilakukan inventarisasi potensi agar bakteri antagonis dapatdimanfaatkan optimal.

2.      Perlunya kerjasama terpadu antara berbagai pihak,pemerintah, perguruan tinggi, dan pengusaha untuk memajukan budidaya udangwindu Indonesia.

Anonim. 2000. Bioluminessence. http://lux.ibp.ru/info/history_html_652ca394.jpg. [4Januari 2008].

Dahuri, R. 2004.Perkembangan dan Harapan Pembangunan Perikanan Budidaya Indonesia ke Depan.dalam Simposium Perkembangan dan Inovasi Ilmu dan Teknologi Akuakultur. AgungSudaryono et al (ed.). Semarang: Masyarakat Akuakultur Indonesia.

Gultom, D.M. 2003. PatogenisitasBakteri VibrioHarveyii Pada Larva Udang Windu (Penaeus monodon Fabr.). Bogor: Institut PertanianBogor.

Hadiwiyoto,S. 1993. Teknologi Pengolahan Hasil Perikanan. Yogyakarta: Liberty.

Lightner,D.V. 2003. Exclusion of Specific Pathogens for Disease Control in a PenaidShrimp Biosecurity Program. In C.S. Lee and P.J. O’Bryen, editors.Biosecurity in Aquaculture Production Systems; Exclusion of Pathogens and OtherUndesirables. The World Aquaculture Society,Baton Rouge, Lousiana, USA.

Putraatmaja,  E. 1997. Analisis Residu Antibiotik Pada UdangAkibat Perlakuan Sebelum Proses Pengolahan. Bogor: InstitutPertanian Bogor.

Rahmatun,S. dan Ahmad Mujiman. 1989. Budidaya Udang Windu. Jakarta: Penebar Swadaya.

Roza,D. dan Zafran. 1998. Pengendalian Vibrioharveyi Secara Biologis pada Larva Udang Windu (Penaeus monodon): AplikasiBakteri Penghambat. J. Penelitian PerikananIndonesia: 4 (2) : 24-30.

Lampiran 1. Karakteristik dua isolat bakteriantagonis dibandingkan dengan Flavobacterium meningosepticum menurut Cowan(1974) dan Acuigrup (1980) serta Vibrio alginolyticus menurut Bauman etal., (1984) dan Holt et al., (1994)

Lampiran 2. Komposisi bahan dalam setiap gram Haimix-S/g